乳鼠移植瘤癌细胞论文范文

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1材料与方法

1．1细胞培养从液氮罐中取出冻存的PC3细胞，迅速放入预热的37℃水浴锅中，快速震荡溶化，1000r•min－1离心5min后，将细胞接种于已配制好的含10％FBS和1％L－Gln的DMEM完全培养基中，置于37℃，5％的CO2培养箱中培养．每隔2～3d更换细胞培养液，待其长到铺满皿底80％时传代．依据Friedenstein［11］提出的全骨髓贴壁培养法分离和纯化大鼠骨髓间充质干细胞（BMSCs）做为阴性对照组细胞，常规传代培养．

1．2软琼脂克隆

1．2．1软琼脂储备胶的制备下层胶制备：配制1．2％的低熔点琼脂糖，高压灭菌，待其温度降至37℃左右后置于37℃水浴锅备用．取1．5mL1．2％低熔点琼脂糖加入已经配好的1．5mL2×DMEM培养基（含20％FBS＋1％Gln），混匀后倒入六孔板中制成软琼脂底板，置于冰袋上待其冷却凝固后备用．上层胶制备：配制0．7％的低熔点琼脂糖，高压灭菌，待其温度降至37℃左右后置于37℃水浴锅备用，取1．5mL0．7％低熔点琼脂糖加入已经配好的约含有1～3×103mL－1PC3细胞的等体积2×DMEM培养基中，混匀后倒入软琼脂底层上，制成双琼脂层，置于冰袋上待其冷却凝固后置于培养箱中培养7～14d左右镜检，观察软琼脂克隆团的形成情况．

1．2．2单细胞软琼脂克隆团的获取软琼脂克隆团形成第14d置于倒置显微镜下观察，标记并挑出较大克隆团后置于细胞培养皿中培养．第3d观察有无贴壁细胞生长，若有则弃去含有琼脂渣的培养基，加入新鲜培养基培养，每隔2～3d更换细胞培养液，待细胞铺满皿底80％～90％时传代；若无贴壁细胞生长则弃去培养皿，重新挑取单克隆团细胞．

1．3乳鼠移植瘤动物模型的构建取对数生长期的实验组细胞PC3和对照组细胞BMSCs，经胰蛋白酶消化后，DMEM完全培养基终止消化，1000r•min－1离心7min，弃上清，DMEM完全培养基重悬细胞，台盼蓝计数后，调整细胞浓度约为2×107mL－1．用1mL注射器吸取0．1mLPC3细胞悬液接种于实验组乳鼠皮下，对照组乳鼠皮下注射0．1mLBMSCs细胞悬液．注射后每天定时观察乳鼠皮下的成瘤情况，用游标卡尺测量皮下肿物的直径，以大于0．5cm为成瘤成功．

1．4病理组织观察和免疫组织化学检测剥离乳鼠皮下产生的肿物，9％福尔马林液固定，组织过夜脱水后，石蜡包埋切片．切片组织经过二甲苯和梯度酒精脱水脱蜡，苏木精染色3～5min，1％HCl分色1～3s，碳酸锂返蓝2min，伊红染色2min，酒精脱水，干燥后中性树脂封片．在光学显微镜下观察组织病理切片形态．免疫组织化学染色按照免疫组化二抗试剂盒说明书操作：石蜡切片烘烤30min后，二甲苯和梯度酒精脱水脱蜡，柠檬酸盐缓冲液抗原修复5min，PBS冲洗3×3min，3％去离子水孵育15min，PBS冲洗3×3min，滴加试剂A（山羊血清）室温孵育15min，倾去勿洗，滴加一抗（阴性对照组一抗用PBS代替），37℃孵育2h，PBS冲洗3×3min，滴加试剂B室温孵育15min，PBS冲洗3×3min，滴加试剂C室温孵育15min，PBS冲洗3×3min，DAB显色，自来水冲洗，干燥，中性树脂封片．光学显微镜下观察抗体表达部位．

2结果与分析

2．1PC3软琼脂克隆团产生和单细胞克隆团形成PC3接种第7d时软琼脂上产生了较小的细胞克隆团（图1：A），待其长到13d时，形成较大的细胞克隆团（图1：B）．选取较大克隆团细胞在液体培养基中分离培养（图1：C，D）后发现，这部分从软琼脂克隆团上挑出的单细胞比未经软琼脂克隆的细胞表现出更强的增殖能力。

2．2乳鼠皮下成瘤18只实验组乳鼠皮下均有直径大于0．5cm的肿物产生，6只对照组乳鼠皮下均无异物产生且生长状态良好．肉眼观察实验组乳鼠发现：注射第2d后乳鼠腋下发红肿胀，触摸质软；第3～4d乳鼠腋下发红完全消失，肿胀部分逐渐变硬，触摸可发现有黄豆粒大小可移动肿物存在（图2：A）．第7d乳鼠皮下肿物逐渐增大，触摸质硬（图2：B）．第16d之后，部分乳鼠维持肿物大小不变，部分乳鼠肿物开始消退（图2：C）．第21d之后，除3只乳鼠皮下存在极小肿物外（图2：D），其余乳鼠肿物均消退．表明在初接种PC3细胞时乳鼠免疫系统发育不完善，肿瘤细胞能够被宿主的免疫系统接受并逃离免疫系统的监控即具有免疫耐受性，使肿瘤在皮下发生并生长．接种16d及之后，有部分乳鼠皮下肿物开始消退，提示此时接种鼠的免疫系统已逐渐发育完全，能够对接种的异质细胞进行免疫监控和杀灭．接种21d后，只有3只鼠皮下存在肿瘤，类似于部分肿瘤存在于人类非免疫缺陷人群中，其余鼠消退证明此时小鼠免疫功能已发育完全．

2．3病理组织变化和CD133表达观察病理组织切片HE染色结果发现：肿物组织内有大片弥漫性分布、紊乱无章排列的肿瘤细胞存在，细胞形态大小不一，核大深染，可见明显病理性不规则核分裂相，为中度不典型增生，病理学上诊断为肿瘤组织（图3：A）．免疫组织化学染色结果显示该肿瘤组织表达了前列腺癌干细胞特异性表面标志物分子CD133细胞膜和细胞浆均呈阳性（＋＋）（图3：B）．

3讨论

肿瘤的发生和发展是一个非常复杂的过程，在生物体内直接研究癌细胞的产生机理和细胞生物学特性受到很多因素的影响．因此，建立理想动物移植瘤模型对各种基础研究和临床研究都有非常重要的意义，但要求该模型的肿瘤发生部位、发病机制以及生物学特性等方面均要符合所研究的人源肿瘤．可移植肿瘤动物模型具有接种肿瘤细胞后实验动物带有同一肿瘤，个体差异较小、生长状况和宿主反应一致，可以较为客观的判断肿瘤治疗的疗效等特点，在目前肿瘤模型研究中应用较为广泛．肿瘤动物模型的移植主要有两种［12］：同种移植和异种移植；同种移植是指模型动物间的移植，而异种移植是指任何人和裸鼠之间的移植．一般的鼠移植性实验肿瘤为自发性或者诱发性肿瘤，这部分肿瘤经传代后可保持其原有特性，从而成为移植性肿瘤．软琼脂克隆形成实验（Softagarassay）是体外研究肿瘤的一项重要实验，常用来检测转化细胞和肿瘤细胞［13］．Li等人的研究发现［14］：通过软琼脂克隆形成实验筛选出的肿瘤细胞在动物成瘤实验中具有强的成瘤和转移能力，并且具有肿瘤干细胞特性［15］．因此本实验利用目前研究较为成熟的前列腺癌细胞PC3中存在极少部分具有致瘤性的CD133＋前列腺癌干细胞［16－18］做为模型动物的接种细胞系，通过软琼脂克隆形成实验筛选出此类细胞中具有强克隆集落形成能力和增殖能力的肿瘤细胞接种于乳鼠皮下，提高致瘤成功率．实验结果显示：接种PC3细胞乳鼠成瘤率为100％，在接种2～15d移植瘤稳定而快速增长，移植瘤经剥离后病理切片HE染色观察有大片弥漫性分布的癌细胞，且有典型的病理学不规则核分裂相存在，病理学上诊断为肿瘤组织，免疫组织化学染色后前列腺癌干细胞表面标志物CD133表达水平呈强阳性，表明本实验成功建立了乳鼠移植瘤模型．综上所述，本实验利用出生2d乳鼠成功构建了动物移植瘤模型，由于刚出生乳鼠的免疫细胞在个体发育的早期对抗原易形成耐受性，因此易于移植瘤的成活和生长，同时正常的免疫机体环境也模拟了临床上肿瘤发生的微环境．此外，乳鼠移植瘤模型能够体现宿主免疫监控移植瘤这一过程，模拟临床肿瘤发生．且这一模型具有成瘤率高、易于存活、生长条件简单等特点，是一种比较理想的移植瘤动物模型。

作者：曾家豫张虹袁红霞牛童廖世奇单位：西北师范大学生命科学学院甘肃省医学科学研究院分子生物中心